Principales tomas de muestras y medios de transportes.

1.- Principales muestras clínicas útiles para el diagnóstico de una enfermedad infecciosa:

Entre las que encontramos:

Sangre

Orina

Expectoración y lavado broncoalveolar

Secreción de herida

LCR

Otras: Heces

Secreciones urogenitales

Biopsia y materiales aspirados.

2.- Condiciones generales para la toma y transporte correcto de las muestras:

En cuanto a la toma de muestra se debe considerar:

Las muestras deben obtenerse preferentemente antes de comenzar la terapia con antibióticos o bien antes de introducir cualquier modificación al tratamiento con antimicrobianos.

La muestra obtenida no debe presentar contaminación con flora habitual, o ésta debe ser la mínima posible.

Se debe usar material estéril en la obtención de muestra y realizarse en condiciones de máxima asepsia, evitando contaminaciones ambientales, del personal médico y del propio enfermo.

Coleccione un apropiado volumen de muestra. Ya que insuficiente material puede disminuir su rendimiento y ser causa de resultados falso-negativos.

Anote en el formulario cualquiera información de interés, tales como si el paciente es inmunosuprimido o si recibe drogas inmunosupresoras, si recibe antibióticos, diagnóstico presuntivo, interés en algún germen, etc.

Seleccione el tipo anatómico correcto donde se obtendrá el espécimen, y utilice la técnica apropiada y los instrumentos o elementos adecuados para su obtención.

En cuanto el cumplimiento del volante:

- Las muestras deben ser identificadas con una etiqueta adherida al envase, y los datos anotados deben coincidir exactamente con los de la solicitud de examen dado por el médico tratante.

· Deben incluirse aquellos datos del paciente que permitan al laboratorio elegir el mejor procedimiento para el aislamiento de patógenos, tales identificación del paciente, identificación del médico tratante, hipótesis diagnóstica, tratamientos (especialmente antibióticos), datos de la muestra (hora de recogida, tipo de muestra, localización anatómica, procedimiento de obtención de la muestra). Entre otras.

En cuanto la identificación del volante :

Cada muestra debe estar acompañada siempre de un volante.

· El recipiente debe identificarse con nombre y apellidos, tipo de muestra, fecha, y hora de extracción.

· El volante y el sobre deberán tener etiqueta de color según su conservación:

- Rojo: en estufa.

-Azul: en nevera.

-Amarillo: a Temperatura ambiente

3- Medios de transportes:

Los medios de transporte están formulados para mantener la viabilidad de los microorganismos, sin embargo, algunos podrían no sobrevivir en un medio pobre en elementos nutricionales específicos.

El transporte de las muestras debe de garantizar el buen manejo y custodia de la muestra para evitar la degradación, por lo tanto es importante que el transporte tome en cuenta condiciones de tiempo de transporte, refrigeración u oscuridad requerida según corresponda.

La mayoría de las especies bacterianas son vulnerables a demoras en su procesamiento, cambios de temperatura, humedad, etc. Durante el transporte las bacterias de rápido crecimiento, pueden crecer sobre los patógenos más fastidiosos por lo que todas las muestras deben ser enviadas inmediatamente al laboratorio después de colectadas.

Se debe instruir al personal médico, de enfermería y mensajeros en la importancia de un transporte expedito de las muestras clínicas.

En los casos en que el transporte o el proceso pudieran demorar, se establecen a continuación las condiciones de temperatura para algunos tipos de muestras:

- Mantenimiento a 4 °C:

Tejido de autopsia, lavado bronquial, biopsia de pulmón, líquido pericardio, orina., Quemaduras, oído externo.

- Mantenimiento a temperatura ambiente :

LCR, Líquido sinovial, abdominal ,amniótico, bilis, aspirado de pulmón, lesión, nasal, aspirado transtraqueal, sangre, humor vítreo, médula ósea, cérvix, conjuntiva, genitales, heces, tracto respiratorio superior y heridas entre otras.

En general no guarde una muestra por más de 24h bajo ninguna condición.

Sin embargo, los virus permanecen estables por 2 a 3 días en medios de transporte apropiados.

Para el transporte de muestras tenemos:

a)-. Para tejidos y órganos:

Se utilizan bolsas plásticas limpias y cerradas herméticamente ó en frascos de vidrio hervidos durante 15 minutos y cerrados con tapa metálica.

Ambos envases deben ser colocados en cajas de plumavit o neveras portátiles con abundante cantidad de hielo en bolsas cerradas o bien usar el sistema Ice-Pak disponible en el comercio. No deben congelarse ni sumergirse en soluciones químicas tal como formalina ya que producen muerte bacteriana.

b).- Para muestras líquidas y secreciones:

Se utilizan preferentemente tórulas ó hisopos estériles disponibles en el comercio.

Es importante recalcar que la tórula debe ser enviada en el interior de un tubo estéril para evitar su contaminación.

Si la secreción está contenida en el interior de un tejido, debe extraerse mediante punción con una jeringa estéril. La sangre puede enviarse en la misma jeringa o bien traspasarla lentamente (sin aguja) a un tubo de vidrio.

4.- Entre algunos medios de transportes tenemos:

-Envase estéril de boca ancha:

· Para: biopsias, tejidos, orina, escamas, líquidos, esputos, secreciones

bronquiales.

· Estudia: micobacterias, aerobios, hongos, antígeno y neumococo.

- Tubo de plástico estéril:

· Para: catéteres (no más de 4 cm), tejidos y líquidos.

· Estudia: aerobios, hongos, micobacterias.

· Precisa 3-4 ml por frasco.

- Tubo estéril de tapón verde:

· Para: líquidos estériles.

· Estudia: micobacterias, aerobios y hongos.

· No válido para: anaerobios, ni para líquidos con alto contenido hemático.

- Hemocultivos adultos:

· Para: sangre y líquidos estériles.

· Estudia: aerobios, anaerobios y hongos levaduriformes.

· Precisa 10 ml por frasco.

- Hemocultivos pediátricos:

· Para: sangre y líquidos estériles.

· Estudia: aerobios y hongos.

- Contenedor especial Para-Pak:

· Para: heces.

· Estudia: aerobios , hongos., Rotavirus.

- Hisopo con medio de transporte Stuart:

· Para: abscesos y heridas recogidas con escobillón.

· Estudia: aerobios y hongos.

· No válido para: anaerobios y micobacterias.

· Este fijador (jalea celeste) no es nutritivo por esta cualidad impide el crecimiento acelerado de otra flora bacteriana y la reproducción del microorganismo presente.

- Torulas:

Es el medio de transporte del coprocultivo con ayuda del fijador Cary Blair (jalea blanca) este medio también se usa en:

Port-A-Cul vial (medio Cary Blair):

· Para: líquidos y exudados obtenidos por aspiración

· Estudia: aerobios, anaerobios, hongos y micobacterias.

Port-A-Cul tubo (medio de Cary Blair):

· Para: raspados de heridas, escaras, abscesos, úlceras, pequeñas biopsias y

tejidos.

· Estudia: aerobios, anaerobios y hongos.

El fijador Cary Blair tiene bajo contenido de nutrientes (lo que ayuda a la recuperación del microorganismo impidiendo su replicación), bajo potencial de oxido-reducción (ya que contiene tioglicolato), y un alto PH (minimiza la muerte bacteriana).